Баранник А.П. Симонов Р.А., Васильев Д.М. [и др.] (2018). Дифференцирование пектолитических патогенов картофеля Pectobacterium и Dickeya spp. генетическим фингерпринтингом // Современные технологии и средства защиты растений-платформа для инновационного освоения в АПК России: мат-лы Междунар. науч.-практ. конф. С. 25.
Белов Д.А., Хютти А.В. (2022). Современные фитопатогенные комплексы болезней картофеля и меры по предотвращению их распространения в России // Картофель и овощи. № 5. С. 18–24. URL: https://doi.org/10.25630/PAV.2022.52.94.003
Будин К.З., Бушкова Л.Н., Власов Н.М., Арсентьева Л.Н. (1987). Оценка селекционного материала картофеля на устойчивость к черной ножке: метод. указания / Всесоюзный НИИ растениеводства им. Н.И. Вавилова (ВИР). Ленинград. 8 с.
Васильева А.А., Игнатов А.Н., Джалилов Ф.С.У. (2024). Оценка устойчивости различных сортов картофеля к возбудителям черной ножки и мягкой гнили // Достижения науки и техники АПК. Т. 38. № 3. С. 10–16.
Игнатов А.Н., Лазарев А.М., Панычева Ю.С., Проворов Н.А., Чеботарь В.К. (2018a). Бактериальные патогены картофеля рода Dickeya: мини-обзор по систематике и этиологии заболеваний // Сельскохозяйственная биология. № 53 (1). С. 123–131.
Игнатов А.Н., Панычева Ю.С., Воронина М.В., Джалилов Ф.С. (2018b). Бактериозы картофеля в Российской Федерации // Картофель и овощи. № 1. С. 1–3.
Лазарев А.М. (1986). Устойчивость перспективных для Северо-Западного региона Нечерноземья сортов картофеля к возбудителю черной ножки // Рациональные методы и средства защиты сельскохозяйственных культур от вредных организмов: Труды Латвийской ордена Трудового Красного Знамени с.-х. академии / Гос. агропромышленный комитет, Латвийская ордена Трудового Красного Знамени с.-х. академия, Великолукский с.-х. ин-т. Т. 234. Елгава: Латвийская ордена Трудового Красного Знамени с.-х. академия. С. 19–21.
Лукьянова А.А., Мирошников К.А. (2019). Оценка терапевтического потенциала фага Q51 для лечения бактериальных инфекций картофеля // Биотехнология в растениеводстве, животноводстве и сельскохозяйственной микробиологии: сб. тезисов докладов 19-й Всерос. конф. молодых ученых, посв. памяти акад. РАСХН Г.С. Муромцева (г. Москва, 15–16 апреля 2019 г.) / Всерос. науч.-иссл. ин-т с.-х. биотехнологии. Москва: Всерос. науч.-иссл. ин-т с.-х. биотехнологии. С. 156–157.
Мирошников К.А., Кабанова А.П., Шнейдер М.М. [и др.] (2018). Принципы использования бактериофагов для контроля мягкогнилостных бактериозов картофеля // Современные технологии и средства защиты растений – платформа для инновационного освоения в АПК России: сб. мат-лов Междунар. науч.-практ. конф. Санкт-Петербург – Пушкин. С. 106–107.
Охлопкова П.П., Лукина Ф.А., Алексеева А.В. (2014). Сорта картофеля, возделываемые в Республике Саха (Якутия). Якутск. 30 с.
Охлопкова П.П., Яковлева Н.С., Протопопова А.В. (2020). Фитосанитарный Мониторинг посадок картофеля в условиях Центральной Якутии // Научная жизнь. Т. 15. № 12 (112). С. 1606–1612. DOI: 10.35679/1991-9476-2020-15-12-1606-1612
Стацюк Н.В., Кузнецова М.А. (2018). Лабораторные методы оценки устойчивости растений и клубней картофеля к возбудителям черной ножки и мягкой гнили клубней // Сельскохозяйственная биология. Т. 53. С. 111–122.
Трускинов Э.В., Ситников М.Н. (2019). Особенности изучения и поддержания коллекции картофеля на фоне вирусных и вирусоподобных заболеваний // Труды по прикладной ботанике, генетике и селекции. № 180 (4). С. 75–80. DOI: 10.30901/2227-8834-2019-4-75-80
Хлопюк М.С., Чалая Н.А., Рогозина Е.В. (2021). Стабильность агрономически ценных признаков у клонов межвидовых гибридов картофеля в условиях Центрального региона европейской территории России // Труды по прикладной ботанике, генетике и селекции. Т. 182. № 4. С. 79–89. DOI: 10.30901/2227-8834-2021-4-79-89
Beňo F., Horsáková I., Kmoch M.[et al.] (2022). Bacteriophages as a strategy to protect potato tubers against Dickeya dianthicola and Pectobacterium carotovorum Soft Rot. Microorganisms, 10 (12), 2369. DOI: 10.3390/microorganisms10122369
Franc G.D. (1999). Persistence and latency of Clavibacter michiganensis subsp. sepedonicus in field‐grown seed potatoes. Plant Disease, 83, 247–250.
Gorshkov V.Y., Toporkova Y.Y., Tsers I.D. [et al.] (2022). Differential modulation of the lipoxygenase cascade during typical and latent Pectobacterium atrosepticum infections. Ann Bot., 129 (3), 271–286. DOI: 10.1093/aob/mcab108
Jee S., Choi J.G., Lee Y.G. [et al.] (2020). Distribution of Pectobacterium species isolated in South Korea and comparison of temperature effects on pathogenicity. Plant Pathology Journal, 36 (4), 346–354. DOI: 10.5423/PPJ.OA.09.2019.0235
Juyo Rojas D.K., Soto Sedano J.C., Ballvora A., Léon J., Mosquera Vásquez T. (2019). Novel organ-specific genetic factors for quantitative resistance to late blight in potato. PLoS One, 14 (7), e0213818. DOI: 10.1371/journal.pone.0213818
Loc M., Milošević D., Ivanović Ž. [et al.] (2022). Genetic diversity of Pectobacterium spp. on potato in Serbia. Microorganisms, 10 (9), 1840. DOI: 10.3390/microorganisms10091840
Nelson G.A. (1982). Corneybacterium sepedonicum in potato: Effect of inoculum concentration on ring rot symptoms and latent infection. Canadian Journal of Plant Pathology, 4, 129–133.
Nykyri J., Niemi O., Koskinen P. [et al.] (2012). Revised phylogeny and novel horizontally acquired virulence determinants of the model soft rot phytopathogen Pectobacterium wasabiae SCC3193. PLoS Pathog., 8 (11), e1003013. DOI: 10.1371/journal.ppat.1003013
Osdaghi E., van der Wolf J.M., Abachi H. [et al.] (2022). Bacterial ring rot of potato caused by Clavibacter sepedonicus: A successful example of defeating the enemy under international regulations. Molecular Plant Pathology, 23 (7), 911–932. DOI: 10.1111/mpp.13191
Park J., Massa A.N., Douches D. [et al.] (2021). Linkage and QTL mapping for tuber shape and specific gravity in a tetraploid mapping population of potato representing the russet market class. BMC Plant Biol., 21 (1), 507. DOI: 10.1186/s12870-021-03265-2
Portier P., Pédron J., Taghouti G. [et al.] (2019). Elevation of Pectobacterium carotovorum subsp. Odoriferum to species level as Pectobacterium odoriferum sp. nov., proposal of Pectobacterium Brasiliense sp. nov. and Pectobacterium actinidiae sp. nov., emended description of Pectobacterium carotovorum and description of Pectobacterium versatile sp. nov., isolated from streams and symptoms on diverse plants. Int. J. Syst. Evol. Microbiol., 69, 3207–3216. DOI: 10.1099/ijsem.0.003611
Vasilyeva A.A., Evseev P.V., Ignatov A.N., Dzhalilov F.S.U. (2024). Pectobacterium punjabense causing blackleg and soft rot of potato: The first report in the Russian Federation. Plants, 13 (15).